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糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus在1946年最先使用高碘酸–雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该技术不仅能显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质。

阿利新蓝(又称阿尔辛蓝、爱先蓝等)和PAS技术联合使用可鉴别同一组织切片中的中性黏蛋白和酸性黏蛋白。这种技术也常用作广泛检测黏蛋白的手段，切片先经标准阿利新蓝(pH=2.5)染色再使用PAS技术。阿利新蓝可将唾液黏蛋白、硫黏蛋白和蛋白多糖染成蓝色。PAS技术可将中性黏蛋白染成深红或红紫色，同时将既含中性黏蛋白又含酸性黏蛋白的组织和细胞染成深浅不同的紫色，这是由于阿利新蓝与Schiff试剂结合并发生反应。上述染色常可出现在含有中性黏蛋白和唾液黏蛋白的小肠杯状细胞中。阿利新蓝的染色原理在于是类铜钛花青染料，这种阳离子染料与酸性基团结合，也即阿利新蓝与组织内含有的阴离子基团如羧基和硫酸根形成不溶性复合物。分子中带正电荷的盐键与酸性黏多糖物质中带负电荷的酸性基团结合形成不溶性的复合物而呈蓝色，再与PAS进行复合染色，就能显示三种不同黏液物质成分。

AB-PAS染色液核心成分为阿利新蓝染色液和Schiff Reagent，多用于黏液物质染色，糖原、中性黏蛋白、各种糖蛋白呈紫红色，其余呈蓝色。

产品组分：

产品编号

产品名称

BL1123A

BL1123B

储存条件

阿利新蓝染色液

50ml

100ml

4℃ 避光

过碘酸溶液

50ml

100ml

4℃ 避光

Schiff Reagent

50ml

100ml

4℃ 避光

苏木素染色液

50ml

100ml

RT 避光

酸性分化液

50ml

100ml

RT

Scott蓝化液

50ml

100ml

RT

使用说明（仅供参考）：

1. 二甲苯或脱蜡透明液（BL170A）脱蜡至水，蒸馏水洗2 min。

2. 入阿利新蓝染色液染色10～20 min。

3. 蒸馏水洗3次，每次1～2min。

4. 入过碘酸溶液氧化5min。

5. 入Schiff Reagent，5浸染10～20min。

6. 倾去Schiff Reagent，流水冲洗10min。

7. (可选)入苏木素染色液染核1～2min。

8. 用酸性分化液分化2～5s，水洗。

9. 用Scott蓝化液返蓝，水洗3min。

10. 逐级常规乙醇脱水，二甲苯或脱蜡透明液透明，中性树胶（BL704A）封固。

阴性对照(可选)：

1. 取淀粉酶1g溶解于PBS(pH5.3) 100ml，处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。

2. (备选方案)取唾液片(过滤后用)处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。

3. (备选方案)如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入Schiff Reagent，结果应为阴性。

染色结果：

糖原、中性黏蛋白、各种糖蛋白：紫红色

酸性黏蛋白(硫黏蛋白和唾液黏蛋白)：蓝色

蛋白多糖和透明质酸：蓝色

备注：含有中性黏蛋白和酸性黏蛋白的细胞或组织可染成不同程度的蓝紫色至紫色。

注意事项：

1. 切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。

2. 过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃最佳。

3. 阿利新蓝染色液、过碘酸溶液、Schiff Reagent均应置于4℃密闭保存，使用时避免接触过多阳光和空气；使用前最好提前30min取出恢复至室温，避光暗处使用。

4. 酸性分化液应经常更换新液，分化时间应该依据切片厚薄、组织类别和酸性分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。

5. 切片在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、组织类别等决定。

6. 用苏木素染色液复染细胞核时应淡染，以免影响阳性物质AB的观察。目的是防止胞浆或黏蛋白着色而掩盖阿利新蓝的颜色。

7. 阿利新蓝-PAS联合技术的染色顺序可影响最终结果，PAS技术在阿尔辛蓝染色之前时，中性黏蛋白和糖原可染成紫色；与此相反，阿利新蓝染色在PAS技术之前时，则可将这些物质染成预期的紫红色。

8. 本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放于普通住宅内。

9. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

保存条件：

一年有效。

糖原PAS染色试剂盒(真菌专用)

货号：BL1122A

规格：4×20ml

品牌：Biosharp

产品简介：

糖原PAS染色液试剂盒(Glycogen Periodic Acid-Schiff Staining Kit)也称过碘酸–雪夫染色试剂盒，即PAS染色试剂盒，是一种使用过碘酸、雪夫(Schiff)试剂对组织中糖原、粘多糖及真菌等进行染色的试剂盒，适用于不同组织的石蜡切片或冰冻切片、培养的细胞、血涂片、骨髓涂片等样品。PAS染色，因其主要用于多糖(polysaccharides)如糖原(glycogen)和粘性物质(mucosubstances)如黏多糖(glycosaminoglycan)、黏蛋白(mucins)、糖蛋白(glycoproteins)和糖脂(glycolipids)等物质的染色，所以也称糖原染色(Glycogen Staining)。过碘酸–雪夫染色是病理学中常规的染色方法之一。

McManus在1946年最先使用高碘酸–雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色液不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质，以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸（又称高碘酸）是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在即能把乙二醇基氧化成醛基，又不至于过氧化，这是很关键的步骤。

本糖原PAS染色液采用特有配方技术，大大增强了染色效果；性能稳定，特异性强；操作简捷，仅需1h左右。

产品组分：

产品编号

产品名称

BL1122A

BL1122B

储存条件

过碘酸溶液

20ml

50ml

4℃ 避光

Schiff Reagent

20ml

50ml

4℃ 避光

亚硫酸钠溶液

20ml

50ml

RT 密闭

Mayer苏木素染色液

20ml

50ml

4℃

使用说明（仅供参考）：

1. 常规固定(常采用10%中性福尔马林BL388), 常规脱水包埋，二甲苯或脱蜡透明液(BL170A)脱蜡至水。

2. 入过碘酸溶液室温氧化5～10min，自来水冲洗2次，蒸馏水浸洗2次。

3. 入Schiff Reagent并加盖，置于室温阴暗处浸染10～20min。

4. 亚硫酸钠溶液滴洗2次，每次2min，流水冲洗2min。

5. Mayer苏木素复染核2～5min，流水冲洗5min。

6. 常规脱水, 二甲苯或脱蜡透明液透明，中性树胶(BL704A)封固。

阴性对照(可选)：

1. 取淀粉酶1g溶解于PBS(pH5.3) 100ml，处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。

2. (备选方案)取唾液片(过滤后用)处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。

3. (备选方案)如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入Schiff Reagent，结果应为阴性。

染色结果：

真菌：紫红色

细胞核：蓝色

备注：颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间的长短。

注意事项：

1. 过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃最佳。

2. 过碘酸溶液、Schiff Reagent使用时避免接触过多的阳光和空气，使用前最好提前30min取出恢复至室温，避光暗处使用。

3. 过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、细胞或组织的类别等决定。

4. 如常规切片建议用糖原PAS染色液(BL1120)，其过碘酸和苏木素浓度都相对高。

5. 本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放于普通住宅内。

6. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

保存条件：

一年有效。

AB-PAS染色试剂盒

货号：BL1123B

规格：6×100ml

品牌：Biosharp

产品简介：

糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus在1946年最先使用高碘酸–雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该技术不仅能显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质。

阿利新蓝(又称阿尔辛蓝、爱先蓝等)和PAS技术联合使用可鉴别同一组织切片中的中性黏蛋白和酸性黏蛋白。这种技术也常用作广泛检测黏蛋白的手段，切片先经标准阿利新蓝(pH=2.5)染色再使用PAS技术。阿利新蓝可将唾液黏蛋白、硫黏蛋白和蛋白多糖染成蓝色。PAS技术可将中性黏蛋白染成深红或红紫色，同时将既含中性黏蛋白又含酸性黏蛋白的组织和细胞染成深浅不同的紫色，这是由于阿利新蓝与Schiff试剂结合并发生反应。上述染色常可出现在含有中性黏蛋白和唾液黏蛋白的小肠杯状细胞中。阿利新蓝的染色原理在于是类铜钛花青染料，这种阳离子染料与酸性基团结合，也即阿利新蓝与组织内含有的阴离子基团如羧基和硫酸根形成不溶性复合物。分子中带正电荷的盐键与酸性黏多糖物质中带负电荷的酸性基团结合形成不溶性的复合物而呈蓝色，再与PAS进行复合染色，就能显示三种不同黏液物质成分。

AB-PAS染色液核心成分为阿利新蓝染色液和Schiff Reagent，多用于黏液物质染色，糖原、中性黏蛋白、各种糖蛋白呈紫红色，其余呈蓝色。

产品组分：

产品编号

产品名称

BL1123A

BL1123B

储存条件

阿利新蓝染色液

50ml

100ml

4℃ 避光

过碘酸溶液

50ml

100ml

4℃ 避光

Schiff Reagent

50ml

100ml

4℃ 避光

苏木素染色液

50ml

100ml

RT 避光

酸性分化液

50ml

100ml

RT

Scott蓝化液

50ml

100ml

RT

使用说明（仅供参考）：

1. 二甲苯或脱蜡透明液（BL170A）脱蜡至水，蒸馏水洗2 min。

2. 入阿利新蓝染色液染色10～20 min。

3. 蒸馏水洗3次，每次1～2min。

4. 入过碘酸溶液氧化5min。

5. 入Schiff Reagent，5浸染10～20min。

6. 倾去Schiff Reagent，流水冲洗10min。

7. (可选)入苏木素染色液染核1～2min。

8. 用酸性分化液分化2～5s，水洗。

9. 用Scott蓝化液返蓝，水洗3min。

10. 逐级常规乙醇脱水，二甲苯或脱蜡透明液透明，中性树胶（BL704A）封固。

阴性对照(可选)：

1. 取淀粉酶1g溶解于PBS(pH5.3) 100ml，处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。

2. (备选方案)取唾液片(过滤后用)处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。

3. (备选方案)如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入Schiff Reagent，结果应为阴性。

染色结果：

糖原、中性黏蛋白、各种糖蛋白：紫红色

酸性黏蛋白(硫黏蛋白和唾液黏蛋白)：蓝色

蛋白多糖和透明质酸：蓝色

备注：含有中性黏蛋白和酸性黏蛋白的细胞或组织可染成不同程度的蓝紫色至紫色。

注意事项：

1. 切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。

2. 过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃最佳。

3. 阿利新蓝染色液、过碘酸溶液、Schiff Reagent均应置于4℃密闭保存，使用时避免接触过多阳光和空气；使用前最好提前30min取出恢复至室温，避光暗处使用。

4. 酸性分化液应经常更换新液，分化时间应该依据切片厚薄、组织类别和酸性分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。

5. 切片在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、组织类别等决定。

6. 用苏木素染色液复染细胞核时应淡染，以免影响阳性物质AB的观察。目的是防止胞浆或黏蛋白着色而掩盖阿利新蓝的颜色。

7. 阿利新蓝-PAS联合技术的染色顺序可影响最终结果，PAS技术在阿尔辛蓝染色之前时，中性黏蛋白和糖原可染成紫色；与此相反，阿利新蓝染色在PAS技术之前时，则可将这些物质染成预期的紫红色。

8. 本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放于普通住宅内。

9. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

保存条件：

一年有效。

糖原PAS染色试剂盒

货号：BL1120C

规格：4×500ml

品牌：Biosharp

产品简介：

糖原PAS染色液试剂盒(Glycogen Periodic Acid-Schiff Staining Kit)也称过碘酸–雪夫染色试剂盒，即PAS染色试剂盒，是一种使用过碘酸、雪夫(Schiff)试剂对组织中糖原、粘多糖及真菌等进行染色的试剂盒，适用于不同组织的石蜡切片或冰冻切片、培养的细胞、血涂片、骨髓涂片等样品。PAS染色，因其主要用于多糖(polysaccharides)如糖原(glycogen)和粘性物质(mucosubstances)如黏多糖(glycosaminoglycan)、黏蛋白(mucins)、糖蛋白(glycoproteins)和糖脂(glycolipids)等物质的染色，所以也称糖原染色(Glycogen Staining)。过碘酸–雪夫染色是病理学中常规的染色方法之一。

McManus在1946年最先使用高碘酸–雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色液不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质，以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸（又称高碘酸）是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在即能把乙二醇基氧化成醛基，又不至于过氧化，这是很关键的步骤。

本糖原PAS染色液采用特有配方技术，大大增强了染色效果；性能稳定，特异性强；操作简捷，仅需1h左右。

产品组分：

产品编号

产品名称

BL1120A

BL1120B

BL1120C

储存条件

过碘酸溶液

50ml

100ml

500ml

4℃ 避光

Schiff Reagent

50ml

100ml

500ml

4℃ 避光

苏木素染色液

50ml

100ml

500ml

RT

酸性乙醇分化液

50ml

100ml

500ml

RT

使用说明（仅供参考）：

1. 常规固定，常采用10%福尔马林固定液（BL401A），常规脱水包埋。

2. 石蜡切片二甲苯或脱蜡透明液（BL170A）脱蜡入蒸馏水；冰冻切片直接入蒸馏水。

3. 自来水冲洗2～3min，再用蒸馏水浸洗2次。

4. 入过碘酸溶液室温放置5～8min，一般不宜超过10min。

5. 自来水冲洗1次，再用蒸馏水浸洗2次。

6. 入Schiff Reagent置于室温阴暗处浸染10～20min，自来水冲洗10min。

7. 入苏木素染色液，染细胞核1～2min，酸性乙醇分化液分化2～5s。

8. 自来水冲洗10～15min，更换蒸馏水清洗，使其返蓝。

9. 逐级常规乙醇脱水，二甲苯或脱蜡透明液透明，中性树胶（BL704A）封固。

阴性对照(可选)：

1. 取淀粉酶1g溶解于PBS(pH5.3) 100ml，处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。

2. (备选方案)取唾液片(过滤后用)处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。

3. (备选方案)如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入Schiff Reagent，结果应为阴性。

染色结果：

PAS反应阳性物质(糖原或多糖)：红色或紫红色

细胞核：蓝色

细胞质：深浅不一的红色

备注：颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间的长短。

注意事项：

1. 切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。

2. 过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃最佳。

3. 过碘酸溶液和Schiff Reagent应置于4℃密闭保存，使用时避免接触过多阳光和空气，使用前，最好提前30min取出恢复到在室温，避光暗处使用。

4. 酸性乙醇分化液应经常更换新液，其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。

5. 在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、组织的类别等决定。

6. 该染色液常用于常规组织切片染色，对于真菌、细胞、极其薄的切片，建议采购糖原PAS染色液(细胞专用) (BL1121), 糖原PAS染色液(真菌专用) (BL1122), 因为其过碘酸溶液和苏木素溶液浓度更低，不宜过染。

7. 冷冻切片染色时间尽量要短。

8. 本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放于普通住宅内。

9. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

保存条件：

一年有效。

糖原PAS染色试剂盒(真菌专用)

货号：BL1122B

规格：4×50ml

品牌：Biosharp

产品简介：

糖原PAS染色液试剂盒(Glycogen Periodic Acid-Schiff Staining Kit)也称过碘酸–雪夫染色试剂盒，即PAS染色试剂盒，是一种使用过碘酸、雪夫(Schiff)试剂对组织中糖原、粘多糖及真菌等进行染色的试剂盒，适用于不同组织的石蜡切片或冰冻切片、培养的细胞、血涂片、骨髓涂片等样品。PAS染色，因其主要用于多糖(polysaccharides)如糖原(glycogen)和粘性物质(mucosubstances)如黏多糖(glycosaminoglycan)、黏蛋白(mucins)、糖蛋白(glycoproteins)和糖脂(glycolipids)等物质的染色，所以也称糖原染色(Glycogen Staining)。过碘酸–雪夫染色是病理学中常规的染色方法之一。

McManus在1946年最先使用高碘酸–雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色液不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质，以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸（又称高碘酸）是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在即能把乙二醇基氧化成醛基，又不至于过氧化，这是很关键的步骤。

本糖原PAS染色液采用特有配方技术，大大增强了染色效果；性能稳定，特异性强；操作简捷，仅需1h左右。

产品组分：

产品编号

产品名称

BL1122A

BL1122B

储存条件

过碘酸溶液

20ml

50ml

4℃ 避光

Schiff Reagent

20ml

50ml

4℃ 避光

亚硫酸钠溶液

20ml

50ml

RT 密闭

Mayer苏木素染色液

20ml

50ml

4℃

使用说明（仅供参考）：

1. 常规固定(常采用10%中性福尔马林BL388), 常规脱水包埋，二甲苯或脱蜡透明液(BL170A)脱蜡至水。

2. 入过碘酸溶液室温氧化5～10min，自来水冲洗2次，蒸馏水浸洗2次。

3. 入Schiff Reagent并加盖，置于室温阴暗处浸染10～20min。

4. 亚硫酸钠溶液滴洗2次，每次2min，流水冲洗2min。

5. Mayer苏木素复染核2～5min，流水冲洗5min。

6. 常规脱水, 二甲苯或脱蜡透明液透明，中性树胶(BL704A)封固。

阴性对照(可选)：

1. 取淀粉酶1g溶解于PBS(pH5.3) 100ml，处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。

2. (备选方案)取唾液片(过滤后用)处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。

3. (备选方案)如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入Schiff Reagent，结果应为阴性。

染色结果：

真菌：紫红色

细胞核：蓝色

备注：颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间的长短。

注意事项：

1. 过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃最佳。

2. 过碘酸溶液、Schiff Reagent使用时避免接触过多的阳光和空气，使用前最好提前30min取出恢复至室温，避光暗处使用。

3. 过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、细胞或组织的类别等决定。

4. 如常规切片建议用糖原PAS染色液(BL1120)，其过碘酸和苏木素浓度都相对高。

5. 本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放于普通住宅内。

6. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

保存条件：

一年有效。

糖原PAS染色试剂盒(细胞涂片专用)

货号：BL1121A

规格：5×20ml

品牌：Biosharp

产品简介：

糖原PAS染色液试剂盒(Glycogen Periodic Acid-Schiff Staining Kit)也称过碘酸–雪夫染色试剂盒，即PAS染色试剂盒，是一种使用过碘酸、雪夫(Schiff)试剂对组织中糖原、粘多糖及真菌等进行染色的试剂盒，适用于不同组织的石蜡切片或冰冻切片、培养的细胞、血涂片、骨髓涂片等样品。PAS染色，因其主要用于多糖(polysaccharides)如糖原(glycogen)和粘性物质(mucosubstances)如黏多糖(glycosaminoglycan)、黏蛋白(mucins)、糖蛋白(glycoproteins)和糖脂(glycolipids)等物质的染色，所以也称糖原染色(Glycogen Staining)。过碘酸–雪夫染色是病理学中常规的染色方法之一。

McManus在1946年最先使用高碘酸–雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色液不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质，以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸（又称高碘酸）是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在即能把乙二醇基氧化成醛基，又不至于过氧化，这是很关键的步骤。

本糖原PAS染色液采用特有配方技术，大大增强了染色效果；性能稳定，特异性强；操作简捷，仅需1h左右。

产品组分：

产品编号

产品名称

BL1121A

BL1121B

储存条件

PAS固定液

50ml

100ml

RT

过碘酸溶液

20ml

50ml

4℃ 避光

Schiff Reagent

20ml

50ml

4℃ 避光

亚硫酸钠溶液

20ml

50ml

RT 密闭

Mayer苏木素染色液

20ml

50ml

4℃

使用说明（仅供参考）：

1. 细胞、骨髓涂片用PAS固定液固定10～15min，水洗、晾干。

2. 入过碘酸溶液，室温氧化15～20min，自来水冲洗2次，蒸馏水浸洗2次。

3. 入Schiff Reagent并加盖，置于室温阴暗处浸染20～30min。

4. 亚硫酸钠溶液滴洗2次，每次2min，该步骤亦可省略，流水冲洗2min。

5. 入Mayer苏木素染色液复染3～5min，水洗、晾干、镜检。

阴性对照(可选)：

1. 取淀粉酶1g溶解于PBS(pH5.3) 100ml，处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。

2. (备选方案)取唾液片(过滤后用)处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。

3. (备选方案)如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入Schiff Reagent，结果应为阴性。

染色结果：

PAS反应阳性物质(糖原或多糖)：红色或紫红色

细胞核：蓝色

细胞质：深浅不一的红色

备注：颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间的长短。

注意事项：

1. 过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃最佳。

2. 过碘酸溶液、Schiff Reagent、苏木素染色液应置于4℃密闭保存，使用时避免接触过多的阳光和空气，使用前最好提前30min取出恢复至室温，避光暗处使用。

3. 过碘酸和Schiff中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、细胞或组织的类别等决定。

4. 该试剂仅用于细胞涂片的染色，如果常规切片建议使用糖原PAS染色液(BL1120)。

5. 本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放于普通住宅内。

6. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

保存条件：

一年有效。

糖原PAS染色试剂盒(细胞涂片专用)

货号：BL1121B

规格：5×50ml

品牌：Biosharp

产品简介：

糖原PAS染色液试剂盒(Glycogen Periodic Acid-Schiff Staining Kit)也称过碘酸–雪夫染色试剂盒，即PAS染色试剂盒，是一种使用过碘酸、雪夫(Schiff)试剂对组织中糖原、粘多糖及真菌等进行染色的试剂盒，适用于不同组织的石蜡切片或冰冻切片、培养的细胞、血涂片、骨髓涂片等样品。PAS染色，因其主要用于多糖(polysaccharides)如糖原(glycogen)和粘性物质(mucosubstances)如黏多糖(glycosaminoglycan)、黏蛋白(mucins)、糖蛋白(glycoproteins)和糖脂(glycolipids)等物质的染色，所以也称糖原染色(Glycogen Staining)。过碘酸–雪夫染色是病理学中常规的染色方法之一。

McManus在1946年最先使用高碘酸–雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色液不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质，以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸（又称高碘酸）是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在即能把乙二醇基氧化成醛基，又不至于过氧化，这是很关键的步骤。

本糖原PAS染色液采用特有配方技术，大大增强了染色效果；性能稳定，特异性强；操作简捷，仅需1h左右。

产品组分：

产品编号

产品名称

BL1121A

BL1121B

储存条件

PAS固定液

50ml

100ml

RT

过碘酸溶液

20ml

50ml

4℃ 避光

Schiff Reagent

20ml

50ml

4℃ 避光

亚硫酸钠溶液

20ml

50ml

RT 密闭

Mayer苏木素染色液

20ml

50ml

4℃

使用说明（仅供参考）：

1. 细胞、骨髓涂片用PAS固定液固定10～15min，水洗、晾干。

2. 入过碘酸溶液，室温氧化15～20min，自来水冲洗2次，蒸馏水浸洗2次。

3. 入Schiff Reagent并加盖，置于室温阴暗处浸染20～30min。

4. 亚硫酸钠溶液滴洗2次，每次2min，该步骤亦可省略，流水冲洗2min。

5. 入Mayer苏木素染色液复染3～5min，水洗、晾干、镜检。

阴性对照(可选)：

1. 取淀粉酶1g溶解于PBS(pH5.3) 100ml，处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。

2. (备选方案)取唾液片(过滤后用)处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。

3. (备选方案)如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入Schiff Reagent，结果应为阴性。

染色结果：

PAS反应阳性物质(糖原或多糖)：红色或紫红色

细胞核：蓝色

细胞质：深浅不一的红色

备注：颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间的长短。

注意事项：

1. 过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃最佳。

2. 过碘酸溶液、Schiff Reagent、苏木素染色液应置于4℃密闭保存，使用时避免接触过多的阳光和空气，使用前最好提前30min取出恢复至室温，避光暗处使用。

3. 过碘酸和Schiff中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、细胞或组织的类别等决定。

4. 该试剂仅用于细胞涂片的染色，如果常规切片建议使用糖原PAS染色液(BL1120)。

5. 本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放于普通住宅内。

6. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

保存条件：

一年有效。

糖原PAS染色试剂盒

货号：BL1120A

规格：4×50ml

品牌：Biosharp

产品简介：

糖原PAS染色液试剂盒(Glycogen Periodic Acid-Schiff Staining Kit)也称过碘酸–雪夫染色试剂盒，即PAS染色试剂盒，是一种使用过碘酸、雪夫(Schiff)试剂对组织中糖原、粘多糖及真菌等进行染色的试剂盒，适用于不同组织的石蜡切片或冰冻切片、培养的细胞、血涂片、骨髓涂片等样品。PAS染色，因其主要用于多糖(polysaccharides)如糖原(glycogen)和粘性物质(mucosubstances)如黏多糖(glycosaminoglycan)、黏蛋白(mucins)、糖蛋白(glycoproteins)和糖脂(glycolipids)等物质的染色，所以也称糖原染色(Glycogen Staining)。过碘酸–雪夫染色是病理学中常规的染色方法之一。

McManus在1946年最先使用高碘酸–雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色液不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质，以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸（又称高碘酸）是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在即能把乙二醇基氧化成醛基，又不至于过氧化，这是很关键的步骤。

本糖原PAS染色液采用特有配方技术，大大增强了染色效果；性能稳定，特异性强；操作简捷，仅需1h左右。

产品组分：

产品编号

产品名称

BL1120A

BL1120B

BL1120C

储存条件

过碘酸溶液

50ml

100ml

500ml

4℃ 避光

Schiff Reagent

50ml

100ml

500ml

4℃ 避光

苏木素染色液

50ml

100ml

500ml

RT

酸性乙醇分化液

50ml

100ml

500ml

RT

使用说明（仅供参考）：

1. 常规固定，常采用10%福尔马林固定液（BL401A），常规脱水包埋。

2. 石蜡切片二甲苯或脱蜡透明液（BL170A）脱蜡入蒸馏水；冰冻切片直接入蒸馏水。

3. 自来水冲洗2～3min，再用蒸馏水浸洗2次。

4. 入过碘酸溶液室温放置5～8min，一般不宜超过10min。

5. 自来水冲洗1次，再用蒸馏水浸洗2次。

6. 入Schiff Reagent置于室温阴暗处浸染10～20min，自来水冲洗10min。

7. 入苏木素染色液，染细胞核1～2min，酸性乙醇分化液分化2～5s。

8. 自来水冲洗10～15min，更换蒸馏水清洗，使其返蓝。

9. 逐级常规乙醇脱水，二甲苯或脱蜡透明液透明，中性树胶（BL704A）封固。

阴性对照(可选)：

1. 取淀粉酶1g溶解于PBS(pH5.3) 100ml，处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。

2. (备选方案)取唾液片(过滤后用)处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。

3. (备选方案)如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入Schiff Reagent，结果应为阴性。

染色结果：

PAS反应阳性物质(糖原或多糖)：红色或紫红色

细胞核：蓝色

细胞质：深浅不一的红色

备注：颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间的长短。

注意事项：

1. 切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。

2. 过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃最佳。

3. 过碘酸溶液和Schiff Reagent应置于4℃密闭保存，使用时避免接触过多阳光和空气，使用前，最好提前30min取出恢复到在室温，避光暗处使用。

4. 酸性乙醇分化液应经常更换新液，其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。

5. 在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、组织的类别等决定。

6. 该染色液常用于常规组织切片染色，对于真菌、细胞、极其薄的切片，建议采购糖原PAS染色液(细胞专用) (BL1121), 糖原PAS染色液(真菌专用) (BL1122), 因为其过碘酸溶液和苏木素溶液浓度更低，不宜过染。

7. 冷冻切片染色时间尽量要短。

8. 本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放于普通住宅内。

9. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

保存条件：

一年有效。

糖原PAS染色试剂盒

货号：BL1120B

规格：4×100ml

品牌：Biosharp

产品简介：

糖原PAS染色液试剂盒(Glycogen Periodic Acid-Schiff Staining Kit)也称过碘酸–雪夫染色试剂盒，即PAS染色试剂盒，是一种使用过碘酸、雪夫(Schiff)试剂对组织中糖原、粘多糖及真菌等进行染色的试剂盒，适用于不同组织的石蜡切片或冰冻切片、培养的细胞、血涂片、骨髓涂片等样品。PAS染色，因其主要用于多糖(polysaccharides)如糖原(glycogen)和粘性物质(mucosubstances)如黏多糖(glycosaminoglycan)、黏蛋白(mucins)、糖蛋白(glycoproteins)和糖脂(glycolipids)等物质的染色，所以也称糖原染色(Glycogen Staining)。过碘酸–雪夫染色是病理学中常规的染色方法之一。

McManus在1946年最先使用高碘酸–雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色液不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质，以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸（又称高碘酸）是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在即能把乙二醇基氧化成醛基，又不至于过氧化，这是很关键的步骤。

本糖原PAS染色液采用特有配方技术，大大增强了染色效果；性能稳定，特异性强；操作简捷，仅需1h左右。

产品组分：

产品编号

产品名称

BL1120A

BL1120B

BL1120C

储存条件

过碘酸溶液

50ml

100ml

500ml

4℃ 避光

Schiff Reagent

50ml

100ml

500ml

4℃ 避光

苏木素染色液

50ml

100ml

500ml

RT

酸性乙醇分化液

50ml

100ml

500ml

RT

使用说明（仅供参考）：

1. 常规固定，常采用10%福尔马林固定液（BL401A），常规脱水包埋。

2. 石蜡切片二甲苯或脱蜡透明液（BL170A）脱蜡入蒸馏水；冰冻切片直接入蒸馏水。

3. 自来水冲洗2～3min，再用蒸馏水浸洗2次。

4. 入过碘酸溶液室温放置5～8min，一般不宜超过10min。

5. 自来水冲洗1次，再用蒸馏水浸洗2次。

6. 入Schiff Reagent置于室温阴暗处浸染10～20min，自来水冲洗10min。

7. 入苏木素染色液，染细胞核1～2min，酸性乙醇分化液分化2～5s。

8. 自来水冲洗10～15min，更换蒸馏水清洗，使其返蓝。

9. 逐级常规乙醇脱水，二甲苯或脱蜡透明液透明，中性树胶（BL704A）封固。

阴性对照(可选)：

1. 取淀粉酶1g溶解于PBS(pH5.3) 100ml，处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。

2. (备选方案)取唾液片(过滤后用)处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。

3. (备选方案)如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入Schiff Reagent，结果应为阴性。

染色结果：

PAS反应阳性物质(糖原或多糖)：红色或紫红色

细胞核：蓝色

细胞质：深浅不一的红色

备注：颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间的长短。

注意事项：

1. 切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。

2. 过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃最佳。

3. 过碘酸溶液和Schiff Reagent应置于4℃密闭保存，使用时避免接触过多阳光和空气，使用前，最好提前30min取出恢复到在室温，避光暗处使用。

4. 酸性乙醇分化液应经常更换新液，其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。

5. 在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、组织的类别等决定。

6. 该染色液常用于常规组织切片染色，对于真菌、细胞、极其薄的切片，建议采购糖原PAS染色液(细胞专用) (BL1121), 糖原PAS染色液(真菌专用) (BL1122), 因为其过碘酸溶液和苏木素溶液浓度更低，不宜过染。

7. 冷冻切片染色时间尽量要短。

8. 本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放于普通住宅内。